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カメルーン中央部のヨーコの自然感染家畜におけるトリパノソーマ・コンゴレンセのジミナゼン酢酸耐性株の分子同定
Molecular identification of diminazene aceturate-resistant strains of Trypanosoma congolense in naturally infected domestic animals of Yoko in the centre region of Cameroon.
PMID: 32448545 DOI: 10.1016/j.vprsr.2020.100405.
抄録
アフリカの動物トリパノソーマ（AAT）は、アフリカにおける家畜生産、農業、食糧安全保障の大きな制約要因であり続けている。AAT対策としていくつかの防除方法が開発されているが、ほとんどの被害を受けた貧困層や農村地域では、トリパノサイド剤の使用が依然として主な対策となっている。しかし、いくつかの研究により、アフリカの多くの国で薬剤耐性トリパノソーム感染が強調されているが、この現象はまだ十分に説明されていない。本研究は、カメルーン南部の中央部地域のヨーコの自然感染した家畜における薬剤耐性トリパノソームの種と分子プロファイルを検出することを目的としている。そのため、2017年10月に348匹の動物を採血した。各動物におけるパックドセルボリューム（PCV）のレベルを評価し、キャピラリーチューブ遠心分離法（CTC）を用いてトリパノソームの感染を調査した。その後、血液サンプルからDNAを抽出し、PCRにより異なるトリパノソーマ種を同定した。トリパノソーマのジミナゼンアセツル酸（DA）および塩化イソメタミディウム（ISM）に対する耐性/感受性の分子プロファイルをPCR-RFLPで調べた．PCR法で解析した動物の約18.4％（64/348頭）にTrypanosoma vivax、Trypanosoma brucei s.l.、Trypanosoma congolense forest and savannahを含むトリパノソーマ感染症が認められた。サバンナではTrypanosoma congolenseが優勢で、感染率は15.2％であった。村落間では、トリパノソーマ全体の感染率に有意差（p˂0.0001）が認められた。ISM耐性トリパノソーマの分子プロファイルは確認されなかった。逆に、T. congolense陽性検体の約88.9％（40/45）がDA耐性株の分子プロファイルを示し、残りの11.1％（5/45）は耐性株と感受性株の混在した分子プロファイルを示した。これらの結果から，ヨーコの家畜におけるT. congolenseのDA耐性株の分子プロファイルは広範囲に分布していることが示唆された。これらのデータは，本研究で検出されたトリパノソーマ株の薬剤感受性を生体内で試験して確認する必要がある。結論として，今後の適切な防除対策が必要である。トリパノソーマに感染した動物の治療には、ベクターコントロールの強化に加えて、ISMの使用が推奨される。
African animal trypanosomiases (AAT) remain the major constraint for livestock production, agriculture and food security in Africa. Although several control measures have been developed to fight AAT, the use of trypanocides remains the main strategy in most affected poor and rural communities. However, several studies have highlighted drug-resistant-trypanosome infections in many African countries, though this phenomenon is still not well described. This study aims to detect trypanosome species and the molecular profiles of drug-resistant-trypanosomes in naturally infected domestic animals of Yoko in the centre region of southern Cameroon. Therefore, in October 2017, 348 animals were blood sampled. The level of packed cell volume (PCV) was evaluated in each animal and trypanosome infections were investigated with the capillary tube centrifugation technique (CTC). Thereafter, DNA was extracted from blood samples and different trypanosome species were identified by PCR. The resistant/sensitive molecular profiles of trypanosomes for diminazene aceturate (DA) and isometamidium chloride (ISM) were investigated by PCR-RFLP. About 18.4% (64/348) of animals analyzed by PCR were found with trypanosome infections including Trypanosoma vivax, Trypanosoma brucei s.l. and Trypanosoma congolense forest and savannah. Trypanosoma congolense savannah was the predominant species with an infection rate of 15.2%. Between villages, significant (p˂0.0001) differences were found in the overall trypanosome infection rates. No molecular profile for ISM resistant-trypanosomes was identified. Conversely, about 88.9% (40/45) of T. congolense positive samples have shown molecular profiles of DA-resistant strains while the remaining 11.1% (5/45) showed mixed molecular profiles of resistant/sensitive strains. Results showed that the molecular profiles of DA-resistant strains of T. congolense in domestic animals of Yoko were widespread. This data needs to be confirmed by testing in vivo the drug susceptibilities of the trypanosome strains herein detected. In conclusion, appropriate future control measures are required. In addition to the intensification of vector control, ISM is advised for the treatment of animals infected by trypanosomes.
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